Ugo Basile機械壓痛儀采用Randall-Selitto測痛法，通過自動化進行大小鼠鼠爪壓痛閾值測試。已被證明在多學術和工業(yè)實驗室研究中，有效幫助鎮(zhèn)痛藥物的快速精確篩選。

實驗動物傷害感受性閾值的確定對于藥物的抗傷害活性具有重要意義，常通過大小鼠后肢反應（縮跳躍、舔足、跳躍）確定，*常用的疼痛過敏方法為壓痛測試。

Ugo basile 機械壓痛儀是一種量化對大小鼠后足背部施加線性增加的機械力，引發(fā)縮足反應的測試設備。是基于 Randall 和Selitto 于 1957 年研究成果（Randall-Selitto 測試法）開發(fā)而來，為評估鎮(zhèn)痛藥物影響疼痛組織對機械壓力刺激反應閾值變化的經(jīng)典工具。機械壓痛儀避免了手動施加壓力，提供了更好的刺激一致性，比傳統(tǒng)的纖維絲和電子測痛儀更適合檢測鼠爪整體機械痛閾值變化。

測試時，將大小鼠爪子置于底座和錐形刺激桿之間，驅動馬達以恒定速率推動讀數(shù)標尺上的重力砝碼前進以增加錐形刺激桿的壓力。當大小鼠出現(xiàn)縮足反應時，測試結果在讀出標尺上讀出。測試模塊為具有生物惰性的材質組成，摩擦系數(shù)低，動物可輕松縮回爪子。

優(yōu)勢特點：

一、歷史悠久，大量研究支持

Ugo basile 機械壓痛儀基于50多年的專業(yè)知識和持續(xù)的產(chǎn)品開發(fā)，測量機械刺激引起的大小鼠鼠爪傷害

感受閾值測量。自1965年以來，已有多個學術研究室使用Ugo basile 機械壓痛儀發(fā)表千篇文章。

二、經(jīng)典的藥物篩選設備

機械壓痛儀具有腳爪整體機械痛刺激特點，而****對此*為為敏感，這對快速、精確篩選鎮(zhèn)痛藥物具有獨特優(yōu)勢。

三、單機三種量程，施力恒定

可設置0-250g、0-500g、0-750g三種量程，可滿足大小鼠測試需求，電機自動化控制，性能穩(wěn)定，排除了人為施力不恒定對測試結果的干擾。

四、無需校準，可升級數(shù)字式記錄型號

設備無需校準，實驗人員可控制腳踏開關實時結束測試?？缮壋蓴?shù)字式記錄型號檢測鼠爪縮足現(xiàn)象并自動記錄數(shù)據(jù)。

應用領域：

機械壓痛儀可用于對正常和發(fā)炎的大小鼠爪進行快速精確的止痛藥物篩選，以及對脊髓反射的有害刺激的反應閾值的測定，可檢測脊髓損傷后神經(jīng)病理性疼痛。其測試結果可的可復現(xiàn)性非常高，可輕松在不同實驗室進行結果的復現(xiàn)。

型號特點：

參考文獻：

1.Baloh, Robert H et al. “Transplantation of human neural progenitor cells secreting GDNF into the spinal cord of patients with ALS: a phase 1/2a trial.” Nature medicine vol. 28,9 (2022): 1813-1822. doi:10.1038/s41591-022-01956-3

2.Bosse, Gabriel D et al. “The 5α-reductase inhibitor finasteride reduces opioid self-administration in animal models of opioid use disorder.” The Journal of clinical investigation vol. 131,10 (2021): e143990. doi:10.1172/JCI143990

3.Bang, Sangsu et al. “GPR37 regulates macrophage phagocytosis and resolution of inflammatory pain.” The Journal of clinical investigation vol. 128,8 (2018): 3568-3582. doi:10.1172/JCI99888

4.Goebel, Andreas et al. “Passive transfer of fibromyalgia symptoms from patients to mice.” The Journal of clinical investigation vol. 131,13 (2021): e144201. doi:10.1172/JCI144201

5.Sikandar, Shafaq et al. “Brain-derived neurotrophic factor derived from sensory neurons plays a critical role in chronic pain.” Brain : a journal of neurology vol. 141,4 (2018): 1028-1039. doi:10.1093/brain/awy009

6.Vidal-Torres, Alba et al. “Bispecific sigma-1 receptor antagonism and mu-opioid receptor partial agonism: WLB-73502, an analgesic with improved efficacy and safety profile compared to strong opioids.” Acta pharmaceutica Sinica. B vol. 13,1 (2023): 82-99. doi:10.1016/j.apsb.2022.09.018

7.Mousa, Shaaban A et al. “Superior control of inflammatory pain by corticotropin-releasing factor receptor 1 via opioid peptides in distinct pain-relevant brain areas.” Journal of neuroinflammation vol. 19,1 148. 15 Jun. 2022, doi:10.1186/s12974-022-02498-8

8.Zhou, Danli et al. “Inhibition of apoptosis signal-regulating kinase by paeoniflorin attenuates neuroinflammation and ameliorates neuropathic pain.” Journal of neuroinflammation vol. 16,1 83. 11 Apr. 2019, doi:10.1186/s12974-019-1476-6

9.Wang, Wenying et al. “Exchange factor directly activated by cAMP-PKCε signalling mediates chronic morphine-induced expression of purine P2X3 receptor in rat dorsal root ganglia.” British journal of pharmacology vol. 175,10 (2018): 1760-1769. doi:10.1111/bph.14191

10.Sala, Emanuele et al. “Improved efficacy, tolerance, safety, and abuse liability profile of the combination of CR4056 and morphine over morphine alone in rodent models.” British journal of pharmacology vol. 177,14 (2020): 3291-3308. doi:10.1111/bph.15049